Créditos ECTS Créditos ECTS: 4.5
Horas ECTS Criterios/Memorias Horas de Tutorías: 2 Clase Expositiva: 23 Clase Interactiva: 18 Total: 43
Lenguas de uso Castellano, Gallego
Tipo: Materia Ordinaria Grado RD 1393/2007 - 822/2021
Departamentos: Microbiología y Parasitología, Fisiología
Áreas: Parasitología, Fisiología
Centro Facultad de Farmacia
Convocatoria: Segundo semestre
Docencia: Con docencia
Matrícula: Matriculable
Esta materia utiliza la formación obtenida en materias cursadas con anterioridad, del módulo de Medicina y Farmacología, especializándose en la descripción de técnicas inmunológicas y hematológicas de diagnóstico en el laboratorio clínico, y se complementa con otras como Análisis Microbiológico y Parasitológico, y Análisis Biológico y Diagnóstico Bioquímico que se imparten en cursos posteriores.
Programa de clases expositivas:
Tema 1: Recogida y procesado de las muestras. Métodos de extracción de sangre. Fraccionamiento de la sangre. Conservación y manipulación de las muestras.
Tema 2: Control de calidad y expresión de los resultados en Hematología.
Tema 3: Hemograma. Recuentos celulares. Fórmula leucocitaria. Hematocrito. Hemoglobina. Índices eritrocitarios. Velocidad de sedimentación globular.
Tema 4: Valoración general de las alteraciones cualitativas y cuantitativas de eritrocitos, leucocitos y plaquetas. Diagnóstico de anemias.
Tema 5: Exploración analítica de la hemostasia. Control de laboratorio de la terapia de los trastornos hemostáticos.
Tema 6: Inmunohematología. Grupos sanguíneos: Sistema ABO y Sistema Rh. Transfusiones sanguíneas. Reacciones transfusionales hemolíticas.
Tema 7. Inmunoensayos. Finalidad. Tipos. Inmunoensayos homogéneos y heterogéneos. Conceptos generales. Afinidad y avidez. Sensibilidad, especificidad y, detectabilidad. Precisión y exactitud. Reactividad cruzada y unión no específica (NSB). Antígenos. Naturaleza y tamaño de los antígenos. Epitopos simples y múltiples. Antígenos naturales y recombinantes.
Tema 8. Ligandos. Moléculas trazadoras convencionales: Trazadores fluorescentes. Trazadores enzimáticos. Trazadores radioactivos. Otras moléculas para el marcaje de antígenos y anticuerpos: Nanopartículas de oro coloidal. Microesferas de látex coloreado. Partículas magnéticas. Biotina. Aplicaciones.
Tema 9. Procedimientos de marcaje de antígenos y anticuerpos. Moléculas trazadoras convencionales: Trazadores fluorescentes. Trazadores enzimáticos. Trazadores radioactivos. Otras moléculas para el marcaje de antígenos y anticuerpos: Nanopartículas de oro coloidal. Microesferas de látex coloreado. Partículas magnéticas. Biotina. Aplicaciones.
Tema 10. Soportes para las reacciones antígeno-anticuerpo. Tipos. Capacidad de ligamiento. Ventajas e inconvenientes. Prevención de reacciones inespecíficas.
Tema 11. Inmunoensayos que no emplean moléculas marcadas. Reacciones de inmunoprecipitación, aglutinación y hemólisis. Concepto. Tipos. Factores condicionantes. Interpretación de resultados. Aplicaciones. Detección de reacciones antígeno-anticuerpo mediante nefelometría. Concepto. Factores condicionantes. Interpretación de resultados. Aplicaciones.
Tema 12. Inmunoensayos para la detección de antígenos en células y tejidos. Técnicas de inmunofluorescencia e inmunohistoquímica. Citometría de flujo. Fundamento. Tipos. Factores condicionantes. Aplicaciones.
Tema 13. Inmunoensayos que emplean moléculas trazadoras radiactivas o enzimas. Radioinmunoensayos. Fundamento. Tipos. Aplicaciones. Enzimo-inmunoensayos. Fundamento. Sustratos enzimáticos. EIAs homogéneos. EIAs heterogéneos indirectos y competitivos. Aplicaciones. EIAs amplificados. Concepto. Empleo de puentes. Reamplificación del producto primario. Amplificación mediante soportes multienzimáticos. Inmuno-PCR. Aplicaciones.
Tema 14. Inmunoensayos que emplean partículas trazadoras coloreadas. Inmunoensayos de difusión lateral (Pruebas inmunocromatográficas). Fundamento. Tipos. Aplicaciones.
Tema 15. Otros inmunoensayos con marcaje enzimático o fluorescente. Inmunodot (dot-blot). Inmunotransferencia. Tecnología de microarrays. Tipos. Fundamento. Aplicaciones.
Tema 16. Técnicas celulares funcionales. Determinación de células secretoras de anticuerpos o citoquinas: Técnicas CELISA y ELISPOT. Pruebas de histocompatibilidad: Test de linfocitotoxicidad. Fundamento. Aplicaciones.
Tema 17. Otras técnicas en alergia y autoinmunidad. Pruebas alérgicas in vivo (prick-test, prueba del parche, intradermorreacciones). Test de activación de basófilos. Fundamento. Interpretación de resultados.
Programa de clases prácticas:
Práctica 1. Determinación cuantitativa de hemoglobina. Determinación de hierro sérico. Exploración global de la coagulación. (3 horas)
Práctica 2. Estudio de las propiedades físicas de la sangre: VSG. Fragilidad osmótica de los hematíes. Hematocrito. (3 horas)
Práctica 3. Determinaciones funcionales con células: fagocitosis y producción de radicales libres del oxígeno (3 horas)
Práctica 4. Técnicas en serología: ELISA e inmunocromatografía (3 horas)
Práctica 5. Demostración de antígenos en tejidos: Western-blot (4 horas)
Básica
- J. L. Vives & J. L. Aguilar, Manual de técnicas de laboratorio en hematología, Ed. Masson, 3ª Ed., 2006.
- G. Ruiz Argüelles, Fundamentos de interpretación clínica de los exámenes de laboratorio, Ed. Panamericana, 2ª Ed., 2010.
- M. Carrasco, Inmunología. Aplicaciones prácticas en hematología y microbiología, Ed. Paraninfo Thomson Learning, 1995.
- K. Rittenhouse-Olson & E. De Nardin, Contemporary clinical immunology and serology, Ed. Pearson, 2013.
Complementaria.
- B. F. Rodak, Hematología: Fundamentos y aplicaciones clínicas, Ed. Panamericana, 2005.
- J. Sans-Sabrafen, C. Besses, J.L. Vives, Hematología Clínica, Elsevier, 2006.
- S. M. Lewis, B.J. Bain & I. Bates, Dacie y Lewis, Hematología Práctica, Elsevier, 10ª Ed., 2008.
- D. Wild, Immunoassay Handbook, Editorial Elsevier, 3rd Ed., 2005.
Conocimientos:
Con 01. Identificar, diseñar, obtener, analizar, controlar y producir fármacos y medicamentos, así como otros productos y materias primas de interés sanitario de uso humano o veterinario.
Con 03. Saber aplicar el método científico y adquirir habilidades en el manejo de la legislación, fuentes de información, bibliografía, elaboración de protocolos y demás aspectos que se consideran necesarios para el diseño y evaluación crítica de ensayos preclínicos y clínicos.
Con 10. Reconocer las propias limitaciones y la necesidad de mantener y actualizar la competencia profesional, prestando especial importancia al autoaprendizaje de nuevos conocimientos basándose en la evidencia científica disponible.
Con 16. Conocer el origen, naturaleza, diseño, obtención, análisis y control de medicamentos y productos sanitarios.
Con 17. Conocer los principios y procedimientos para la determinación analítica de compuestos: técnicas analíticas aplicadas al análisis de agua, alimentos y medio ambiente.
Con 18. Conocer y aplicar las técnicas principales de investigación estructural incluyendo la espectroscopia.
Con 19. Aplicar los conocimientos de Física y Matemáticas a las ciencias farmacéuticas.
Con 20. Aplicar técnicas computacionales y de procesamiento de datos, en relación con información referente a datos físicos, químicos y biológicos.
Con 21. Conocer las estructuras de las biomoléculas y sus transformaciones en la célula.
Con 24. Conocer la naturaleza y comportamiento de agentes infecciosos.
Con 34. Conocer y comprender los fundamentos básicos de los análisis clínicos y las características y contenidos de los dictámenes del diagnóstico de laboratorio
Con 36. Conocer y comprender las técnicas utilizadas en el diseño y evaluación de los ensayos preclínicos y clínicos.
Con 40. Conocer y comprender la estructura y función del cuerpo humano, así como los mecanismos generales de la enfermedad, alteraciones moleculares, estructurales y funcionales, expresión sindrómica y herramientas terapéuticas para restaurar la salud.
Con 42. Conocer las Técnicas analíticas relacionadas con diagnóstico de laboratorio, tóxicos, alimentos y
medioambiente.
Con 46. Dominar técnicas de recuperación de información relativas a fuentes de información primarias y secundarias (incluyendo bases de datos con el uso de ordenador).
Habilidades o destrezas:
H/D 01. Intervenir en las actividades de promoción de la salud, prevención de enfermedad, en el ámbito individual, familiar y comunitario; con una visión integral y multiprofesional del proceso salud-enfermedad.
H/D 02. Diseñar, aplicar y evaluar reactivos, métodos y técnicas analíticas clínicas, conociendo los fundamentos básicos de los análisis clínicos y las características y contenidos de los dictámenes de diagnóstico de laboratorio.
H/D 03. Evaluar los efectos toxicológicos de sustancias y diseñar y aplicar las pruebas y análisis correspondientes.
H/D 04. Desarrollar análisis higiénico-sanitarios (bioquímico, bromatológico, microbiológicos, parasitológicos) relacionados con la salud en general y con los alimentos y medio ambiente en particular.
H/D 06. Promover las capacidades de trabajo y colaboración en equipos multidisciplinares y las relacionadas con otros profesionales sanitarios.
H/D 07. Seleccionar las técnicas y procedimientos apropiados en el diseño, aplicación y evaluación de reactivos, métodos y técnicas analíticas.
H/D 08. Llevar a cabo procesos de laboratorio estándar incluyendo el uso de equipos científicos de síntesis y análisis, instrumentación apropiada incluida.
H/D 09. Estimar los riesgos asociados a la utilización de sustancias químicas y procesos de laboratorio.
H/D 10. Aplicar los conocimientos de Física y Matemáticas a las ciencias farmacéuticas.
H/D 11. Aplicar técnicas computacionales y de procesamiento de datos, en relación con información referente a datos físicos, químicos y biológicos.
H/D 20. Evaluar los efectos toxicológicos de sustancias y diseñar y aplicar las pruebas y análisis correspondientes.
Competencias:
Comp 01. Capacidad de análisis y síntesis.
Comp 02. Capacidad de organizar y planificar
Comp 03. Comunicación oral y escrita en la propia lengua.
Comp 05. Habilidades básicas de manejo del ordenador.
Comp 06. Habilidades de gestión de la información (habilidad para buscar y analizar información proveniente de fuentes diversas).
Comp 07. Resolución de problemas.
Comp 08. Toma de decisiones.
Comp 10. Capacidad crítica y autocrítica.
Comp 11. Trabajo en equipo.
Comp 12. Habilidades interpersonales.
Comp 13. Capacidad de trabajar en un equipo interdisciplinar.
Comp 14. Capacidad para comunicarse con expertos de otras áreas.
Comp 18. Capacidad de aplicar los conocimientos en la práctica.
Comp 19. Habilidades de investigación.
Comp 20. Capacidad de aprender.
Comp 21. Capacidad para adaptarse a nuevas situaciones.
Comp 22. Capacidad para generar nuevas ideas (creatividad).
Comp 23. Liderazgo.
Comp 25. Habilidad para trabajar de forma autónoma.
Comp 28. Preocupación por la calidad.
Comp 29. Motivación de logro.
La docencia contará con las siguientes actividades formativas:
A) Clases expositivas en grupo grande (“CE” en las tablas horarias). Se recomienda al estudiante la asistencia, pudiéndose controlar puntualmente la misma.
B) Seminarios. Al finalizar las clases teóricas se impartirán 2 clases de seminario por grupo para resolución de ejercicios prácticos.
C) Clases interactivas de laboratorio: Se controlará la asistencia. El alumno no superará la asignatura si no realiza las prácticas de laboratorio. Una vez realizadas las prácticas, éstas serán válidas en los cursos académicos posteriores, no teniendo fecha de caducidad.
D) Tutorías de pizarra en grupo muy reducido (“T” en las tablas horarias). Se programarán por el profesor a demanda de los alumnos.
1. El alumno no superará la asignatura si no realiza las prácticas de laboratorio.
2. La evaluación consistirá en:
a) Un examen escrito, que consistirá en preguntas tipo test, preguntas cortas y/o casos clínicos y supondrá el 90% de la nota final. 2/3 del valor del examen corresponderá al contenido de la materia de Análisis Inmunológico (AI) y 1/3 al de la materia de Análisis Hematológico (AH). Será necesario alcanzar una puntuación mínima del 50% en los contenidos de ambas materias como condición imprescindible para superar la materia. En el caso de no alcanzar la puntuación mínima, la nota que constará en el acta será la de la parte suspensa. Los alumnos que no superen la puntuación mínima de una parte y superen a otra en el examen de primera oportunidad, deberán repetir solo la parte suspensa en el examen de segunda oportunidad.
b) Una evaluación continua, en la que se valorará la participación en las clases expositivas e interactivas que supondrá el 10% de la nota final, distribuyendo ese porcentaje en un 8% para la materia AI y un 2% para la de AH. Esta evaluación se mantendrá tanto en la primera cómo en la segunda convocatoria del año académico en curso.
3. El alumnado repetidor no tendrá que repetir las prácticas si ya las había hecho nos últimos 4 cursos anteriores.
4. Los criterios de evaluación de la segunda oportunidad serán los mismos que los de la primera oportunidad y solo serán válidos para el curso académico en el que se curse la materia.
Horas de trabajo presencial en el aula o en el laboratorio 45*
Horas trabajo personal del alumno 67,5*
Se recomienda llevar la materia al día para un mejor aprovechamiento de la misma, la asistencia a las clases expositivas, una dedicación regular, no avanzar sin entender y conocer la materia anterior, utilizar la plataforma virtual como complemento, consultar la bibliografía, utilizar las horas de tutorías para resolver las dudas, y leer el guión de prácticas antes de acudir a realizarlas.
Maria Jose Mancebo Seoane
Coordinador/a- Departamento
- Fisiología
- Área
- Fisiología
- Teléfono
- 881814926
- Correo electrónico
- maria.mancebo [at] usc.es
- Categoría
- Profesor/a: Profesor Contratado/a Doctor
Jose Manuel Leiro Vidal
- Departamento
- Microbiología y Parasitología
- Área
- Parasitología
- Teléfono
- 881814893
- Categoría
- Profesor/a: Catedrático/a de Universidad
Seila Couso Pérez
- Departamento
- Microbiología y Parasitología
- Área
- Parasitología
- Correo electrónico
- seila.couso.perez [at] usc.es
- Categoría
- Profesor/a: Ayudante Doutor LOSU
Maria Del Mar Quiñones Tellez
- Departamento
- Fisiología
- Área
- Fisiología
- Correo electrónico
- mar.quinones [at] usc.es
- Categoría
- Investigador/a Miguel Servet
Sandra Martin Garcia
- Departamento
- Microbiología y Parasitología
- Área
- Parasitología
- Correo electrónico
- sandramartin.garcia [at] usc.es
- Categoría
- Predoctoral USC
| Jueves | |||
|---|---|---|---|
| 11:00-12:00 | GrupoA /CLE_01 | Castellano | 5035 Aula 2.1 Facultad de Políticas |
| 16:00-17:00 | GrupoB /CLE_02 | Castellano | 5035 Aula 2.1 Facultad de Políticas |
| Viernes | |||
| 11:00-12:00 | GrupoA /CLE_01 | Castellano | 5035 Aula 2.1 Facultad de Políticas |
| 16:00-17:00 | GrupoB /CLE_02 | Castellano | 5035 Aula 2.1 Facultad de Políticas |